大腸桿菌使用方法
質粒轉化大腸桿菌TG1菌種的方法有很多，如電轉化、化學轉化等。根據實驗方法的不同，用的試劑和培養基有所不同。本手冊提供一個電轉化方
法。
挑取酵母單菌落，接種至含有 5 mL YPD 培養基的 50 mL 三角瓶中，30℃，250-300 r/min 培養過夜；
取 100-500 μL （≤1:100）的培養物接種至含有 50 mL 新鮮培養基的200 mL 三角搖瓶中，28~30℃，250-300 r/min 培養過夜(約 20 小時)，至 OD600 達到 1.3~1.5；
將細胞培養物于 4℃，1500g 離心 5 分鐘，用 50 mL 的冰預冷的無菌水將菌體沉淀重懸；
按步驟 3 離心，用 25 mL 的冰預冷的無菌水將菌體沉淀重懸；
按步驟 3 離心，用 2-5 mL，1M 的冰預冷的山梨醇溶液將菌體沉淀重懸；
按步驟 3 離心，用 160 μL 的冰預冷的 1M 的山梨醇溶液將菌體沉淀重懸，其終體積約為 240 uL；
將 5~20 μg 的線性化 DNA 溶解在 5~10 μL TE 溶液中，與 80 μL 的上述步驟 6 所得的菌體混勻，轉至 0.2 cm 冰預冷的電轉化杯中；
將電轉化杯冰浴 5 分鐘；
根據電轉化儀提供的資料，參考其他文獻及多次摸索，確定合適的電壓、電流、電容等參數，按優化的參數，進行電擊（推薦：電壓 1.5 kV ；電容 25 μF ；電阻 200 Ω；電擊時間為 4 ～10 msec）。
電擊完畢后，馬上加入 1 mL 1M 的冰預冷的山梨醇溶液將菌體混勻，轉至 1.5 mL 的 EP 管中，置于 30℃搖床低速培養 1 小時；
將菌體懸液涂布于 MD 平板上，每 200~600 μL 涂布一塊平板；
將平板置于 30℃倒置培養，直至單個菌落出現（3-4 天）。
四、注意事項
涂布用量可根據具體實驗調整。若轉化的DNA 總量較多，可取少量轉化產物涂布平板；若轉化的DNA 總量較少，可取200-300μL轉化產物涂布平板。若預計的克隆數較少，可通過離心(4,000rpm，2分鐘)后吸除部分培養液，懸浮菌體后將其涂布于平板中。
新制備的固體培養基不易涂干，可將平板正置于37℃直至液體被吸收后再倒置培養。
涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的轉化菌落數過少，可以將剩下的菌液再涂布新培養基進行培養。
